Gestion de l’oxygene dissous avec deux Capteurs dans une serre goutte-a-goutte en boucle fermee

La plupart des exploitations en serre qui surveillent l’oxygène dissous le font en un seul point — généralement quelque part près de la cuve de mélange ou du collecteur. Cela semble logique : maîtriser ce que l’on peut maîtriser, mesurer là où l’on dose. Mais dans un système de goutte-à-goutte en boucle fermée avec un seul point d’oxygénation à l’entrée de la lagune et 100 mètres ou plus de tuyauterie entre l’injection et les goutteurs les plus éloignés, un seul capteur crée un angle mort fondamental.

L’injecteur se trouve à une extrémité. Les racines sont à l’autre. Tout ce qui se passe entre ces deux points — décroissance liée à la température, consommation d’oxygène par le biofilm, pertes pendant le transit en cuve, turbulence au niveau des émetteurs — est invisible pour un contrôleur qui n’en surveille qu’un seul.

Cet article décrit une architecture à deux capteurs qui comble cet écart : un capteur à la sortie de la lagune (juste après l’injecteur) pilotant l’injection marche/arrêt, et un capteur au niveau des goutteurs fournissant un retour intégratif lent afin d’adapter au fil du temps la consigne de la lagune.

La plupart des exploitations en serre qui surveillent l’oxygène dissous le font en un seul point — généralement quelque part près de la cuve de mélange ou du collecteur. Cela semble logique : maîtriser ce que l’on peut maîtriser, mesurer là où l’on dose. Mais dans un système de goutte-à-goutte en boucle fermée avec un seul point d’oxygénation à l’entrée de la lagune et 100 mètres ou plus de tuyauterie entre l’injection et les goutteurs les plus éloignés, un seul capteur crée un angle mort fondamental.

L’injecteur se trouve à une extrémité. Les racines sont à l’autre. Tout ce qui se passe entre ces deux points — décroissance liée à la température, consommation d’oxygène par le biofilm, pertes pendant le transit en cuve, turbulence au niveau des émetteurs — est invisible pour un contrôleur qui n’en surveille qu’un seul.

Cet article décrit une architecture à deux capteurs qui comble cet écart : un capteur à la sortie de la lagune (juste après l’injecteur) pilotant l’injection marche/arrêt, et un capteur au niveau des goutteurs fournissant un retour intégratif lent afin d’adapter au fil du temps la consigne de la lagune.

écrit par

Fondateur et PDG

Bostjan Veronik

Expert chevronné en technologie de l'eau et entrepreneur avec une vaste expérience dans le développement technologique, le transfert de technologie et la gestion des connaissances au sein de l'industrie de l'eau. MBA de l'EMLYON Business School, récipiendaire du Prix de l'Innovation slovène

Abonnez-vous à notre newsletter mensuelle sur l'eau

Nous pourrions vous envoyer un e-mail si nous avons quelque chose de digne d'intérêt, rédigé par nos professionnels de l'eau

Comment l'OD se comporte à travers un système de goutte-à-goutte

Avant de placer des capteurs ou d'écrire une logique de contrôle, il est utile de comprendre où va l'OD dans un système typique. L'eau quitte l'injecteur du bassin au taux d'OD le plus élevé qu'elle aura jamais. À partir de ce point, elle ne fait que perdre de l'oxygène.

Les pertes s'accumulent à travers quatre étapes distinctes :

Du bassin au réservoir de mélange — le temps de séjour en conduite aux débits typiques des serres (100–150 L/min à travers une tuyauterie de 50 mm) est de 3 à 6 minutes pour un parcours de 25 m. La respiration microbienne et la demande chimique en oxygène (DCO et DBO) dans les canaux d'irrigation et les tuyauteries sont les mécanismes de consommation dominants à ce stade [1]. Ajoutez une perte de transit en réservoir d'environ 0,2 mg/L lorsque l'eau pénètre dans le réservoir de mélange et qu'elle est agitée par la pompe de retour.

Du réservoir de mélange au réservoir de tête — perte de conduite similaire plus un autre transit par réservoir. Le réservoir de mélange peut être un puits d'OD important si la chimie des engrais est active (dosage d'acide, interaction du CO₂ avec les bicarbonates) ou si l'eau est chauffée. La perte combinée ici est généralement de 0,4–0,7 mg/L. Une exploitation commerciale a signalé une sursaturation à 10 mg/L au réservoir spécifiquement pour s'assurer qu'un taux de 5 mg/L ou plus serait maintenu après l'ajout des nutriments et le passage de la solution dans la serre [2].

Du collecteur au goutteur le plus éloigné — il s'agit du segment le plus long et le plus variable. Des recherches sur la dynamique de l'OD dans les tuyaux capillaires d'irrigation goutte-à-goutte ont montré que la perte d'OD dans l'eau aérée était plus importante dans les 10 derniers mètres d'un parcours que dans les 10 premiers mètres, indiquant une décomposition accélérée à mesure que le temps de séjour s'allonge [3]. La même étude a révélé qu'un goutteur à labyrinthe de 2,2 L/h provoquait une réduction de 33,2 % de la concentration en OD dans l'eau aérée traversant le système [3]. La turbulence du goutteur lors de la distribution ajoute une perte d'étape supplémentaire car les chutes de pression provoquent la coalescence des bulles.

Budget total de dégradation — pour un système bien entretenu à 20 °C avec un parcours total de tuyau de 135 m, attendez-vous à une perte de 1,5–2,0 mg/L de l'injecteur au goutteur le plus éloigné. À 24 °C, cela augmente en raison d'un taux de décomposition plus élevé (le taux métabolique double environ par augmentation de 10 °C, Q₁₀ ≈ 2) et d'un plafond de saturation plus bas. Le transport longue distance en canalisation isole l'eau de l'atmosphère pendant de longues périodes, ce qui réduit la concentration en OD — un problème documenté explicitement dans les systèmes de goutte-à-goutte desservant des cultures sur de longues distances [4]. Dans les conduites en polyéthylène noir exposées au soleil, la perte de DO causée par la température est aggravée par le gain thermique solaire dans les parois des tuyaux.

Cela signifie que pour garantir 6,0 mg/L au goutteur le plus éloigné, vous devez injecter à environ 8,5–9,0 mg/L au niveau du bassin. Un niveau d'OD supérieur à 8 mg/L est généralement considéré comme bon pour la production sous serre, et c'est un problème courant que les niveaux d'OD dans l'alimentation d'irrigation tombent à des niveaux hypoxiques (inférieurs à 4 mg/L) [1]. Les conditions estivales poussent fréquemment les températures des solutions nutritives au-dessus de 22 °C — précisément au moment où la demande des plantes est la plus élevée et où le plafond de saturation diminue [5].

Méthode d'oxygénation et son effet sur la courbe de dégradation

L'architecture à deux capteurs décrite ici fonctionne quelle que soit la méthode d'oxygénation utilisée — générateurs de nanobulles, injecteurs venturi, dissolution d'O₂ pur, dosage de peroxyde d'hydrogène ou toute autre combinaison. La logique de contrôle est la même. Ce qui diffère entre les méthodes, c'est le plafond d'injection atteignable et la vitesse à laquelle l'OD se dégrade dans le tuyau après l'injection.

L'aération conventionnelle et l'injection par venturi créent des bulles de l'ordre de 50 à 1000 µm. Celles-ci remontent à la surface et s'échappent en quelques secondes à quelques minutes. Sous la pression de la conduite, elles se coalescent facilement et s'échappent par dégazage à chaque chute de pression — coudes, vannes, goutteurs. L'utilisation plus large d'eau aérée pour l'irrigation a historiquement été limitée par la non-uniformité sur le terrain et la longévité limitée de l'oxygène dans l'eau [6]. Pour les longs parcours de tuyaux, l'aération conventionnelle a du mal à maintenir un niveau d'OD adéquat à l'extrémité la plus éloignée sans un second point d'injection à mi-système.

Les systèmes à nanobulles produisent des bulles principalement inférieures à 200 nm. À cette échelle, elles résistent à la coalescence et restent en suspension beaucoup plus longtemps, réduisant ainsi la constante de vitesse de décomposition effective tout au long du parcours du tuyau. Les recherches ont montré que les nanobulles prolongent la durée de vie de l'OD dans l'eau par rapport à l'injection conventionnelle, ce qui les rend mieux adaptées aux longs réseaux de distribution.

Le dosage de peroxyde d'hydrogène (H₂O₂) fonctionne différemment — il apporte de l'oxygène par décomposition chimique au niveau de la zone racinaire plutôt que sous forme de gaz dissous en transit. À faibles concentrations (généralement 10–30 mg/L), il libère de l'oxygène lorsqu'il se décompose au contact de la matière organique et de la surface des racines, fournissant une source d'oxygène localisée plutôt qu'une augmentation globale de l'OD dans la colonne d'eau. Il est moins efficace en tant qu'outil de gestion globale de l'OD dans les tuyaux et doit plutôt être considéré comme un traitement d'hygiène de la rhizosphère et d'oxygénation d'appoint.

L'injection d'O₂ pur par dissolution sous pression (contacteurs Venturi ou à cône) permet d'obtenir l'OD globale la plus élevée — couramment de 20 à 40 mg/L — mais cet OD élevé est instable dans les systèmes ouverts ou à basse pression et se dégazera rapidement. Elle est plus efficace dans les circuits fermés pressurisés ou immédiatement avant les goutteurs.

En pratique, le choix de la méthode détermine deux paramètres que le système de contrôle doit connaître : l'OD maximal atteignable au point d'injection, et la constante de vitesse de décomposition attendue à travers le tuyau. Tous deux alimentent le plafond de consigne et le calcul du budget de dégradation. La logique du capteur elle-même ne change pas.

L'architecture à deux capteurs

Capteur 1 : sortie du bassin (boucle de contrôle rapide)

Positionnez ce capteur immédiatement en aval de l'unité d'oxygénation, avant la première pompe ou un parcours de tuyau important. Son rôle est purement mécanique : il pilote l'activation/désactivation de l'injecteur et réagit en quelques secondes.

Les seuils de marche/arrêt doivent être définis avec une bande d'hystérésis suffisamment large pour éviter les cycles courts. Pour un système de plus de 100 m, une hystérésis de 0,6–0,8 mg/L est appropriée. Le raisonnement : aux débits typiques, le temps de transport de l'injecteur au goutteur le plus éloigné est de 15 à 20 minutes. Une bande d'hystérésis étroite fait cycler l'injecteur plus rapidement que l'eau ne peut voyager, de sorte que le capteur perçoit l'effet des cycles précédents avant la plante, créant ainsi des oscillations.

Injector ON  when lagoon DO < lagoon_setpoint
Injector OFF when lagoon DO > lagoon_setpoint + 0.7 mg/L
Injector ON  when lagoon DO < lagoon_setpoint
Injector OFF when lagoon DO > lagoon_setpoint + 0.7 mg/L
Injector ON  when lagoon DO < lagoon_setpoint
Injector OFF when lagoon DO > lagoon_setpoint + 0.7 mg/L

Cette boucle fonctionne sur un cycle court — toutes les 30 à 60 secondes. Elle ne modifie pas le point de consigne. Elle décide uniquement d'injecter ou non sur la base de la valeur actuelle du point de consigne.

Capteur 2 : goutteurs (boucle d'intégration lente)

Positionnez ce capteur au niveau d'un goutteur représentatif — pas le plus proche (qui affichera toujours une valeur élevée) et pas le plus éloigné s'il s'agit d'une valeur aberrante. Un goutteur situé à environ 70–80 % du parcours maximal de conduite donne une lecture représentative de ce que reçoit la majorité de la culture.

Ce capteur fonctionne sur un cycle de 10 minutes et utilise une moyenne mobile de ses lectures, et non des valeurs instantanées. L'OD instantané du goutteur est instable — il varie en fonction du calendrier des impulsions d'irrigation, du séquençage des vannes de zone et du retard de réponse du capteur. Une moyenne mobile sur 10 minutes lisse ces variations pour obtenir un signal stable.

La boucle lente ajuste le point de consigne du bassin en fonction de la différence entre la moyenne du goutteur et la cible de ce dernier :

dripper_error = dripper_target - dripper_do_10min_average
lagoon_setpoint += dripper_error × 0.4
lagoon_setpoint = clamp(lagoon_setpoint, min_setpoint, sat × 0.90)
dripper_error = dripper_target - dripper_do_10min_average
lagoon_setpoint += dripper_error × 0.4
lagoon_setpoint = clamp(lagoon_setpoint, min_setpoint, sat × 0.90)
dripper_error = dripper_target - dripper_do_10min_average
lagoon_setpoint += dripper_error × 0.4
lagoon_setpoint = clamp(lagoon_setpoint, min_setpoint, sat × 0.90)

Le gain de 0,4 signifie qu'un déficit de 0,5 mg/L au goutteur déplace le point de consigne de 0,2 mg/L par cycle — pour atteindre une compensation totale en environ 30–40 minutes. Cet ajustement est volontairement lent. Il suit les variations thermiques d'un après-midi ensoleillé ou un changement de saison ; il ne réagit pas à une seule lecture parasitée ni à une courte pause d'irrigation.

Le verrouillage supérieur n'est pas un plafond physique — l'eau peut être sursaturée bien au-delà de la saturation d'équilibre de l'air, et les systèmes utilisant l'injection d'O₂ pur ou des générateurs de nanobulles atteignent couramment 15–25 mg/L. Le risque avec un OD très élevé chez les plantes n'est pas l'embolie (un risque propre aux poissons ayant un système vasculaire fermé) mais les rendements agronomiques décroissants.

Le plafond supérieur pratique pour la consigne du bassin est donc fixé par deux éléments : la puissance nominale de l'unité d'oxygénation et le point au-delà duquel une injection supplémentaire n'apporte plus aucun gain mesurable au niveau du goutteur. Pour la plupart des exploitations sous serre ayant un parcours de plus de 100 m, une valeur de 12–14 mg/L à la sortie du bassin est un plafond raisonnable — assez élevé pour couvrir le budget de dégradation tout en restant dans la plage agronomique utile pour la zone racinaire. Le seuil inférieur doit être fixé au-dessus du niveau d'injection minimal significatif — généralement 7,5 mg/L — en dessous duquel il n'y a plus assez de marge pour couvrir la chaîne de décomposition.

Ce que le point de consigne vous apprend au fil du temps

Le point de consigne du bassin n'est pas simplement une variable de contrôle — c'est un signal de diagnostic. Enregistrez-le en continu aux côtés de la température de l'eau.

Sur une échelle de quelques heures, la variation du point de consigne suit la température diurne. À mesure que la serre se réchauffe au cours de la matinée, le plafond de saturation baisse et la décomposition s'accélère ; la boucle lente fait grimper la consigne. C'est normal et attendu. Le maintien de la température de la solution nutritive entre 18 et 20 °C constitue une base solide pour la disponibilité de l'oxygène — l'isolation des réservoirs et la gestion des systèmes d'échange de chaleur sont des points de départ pratiques [5].

À l'échelle de quelques semaines, un point de consigne qui grimpe plus rapidement que ce que la température seule pourrait expliquer est presque toujours le signe d'un biofilm. Le biofilm dans les tuyaux réduit l'OD en augmentant la demande biologique en oxygène — la matrice du biofilm elle-même ainsi que la matière organique qu'elle abrite consomment de l'oxygène en continu [1, 7]. Le biofilm et la matière organique présents dans l'eau sont identifiés comme les principaux facteurs de consommation d'oxygène dans le système d'irrigation, et des niveaux d'OD contrôlés ne peuvent être fournis de manière fiable aux plantes que lorsque le biofilm est éliminé [7]. L'accumulation est progressive — généralement sur plusieurs semaines dans les systèmes avec recirculation des eaux de drainage — et la boucle lente compense en augmentant la consigne. Lorsque le point de consigne s'approche du plafond pratique de l'injecteur et que le capteur du goutteur reste en dessous de la cible, l'architecture à injecteur unique a atteint sa limite et un rinçage des conduites s'impose.

Le diagnostic critique : consigne au plafond, goutteur toujours bas

L'alerte la plus importante que le système à deux capteurs puisse générer est la suivante :

Le point de consigne du bassin a atteint le plafond pratique de l'unité d'oxygénation, mais l'OD du goutteur reste en dessous de la cible.

Cet état de fait est sans ambiguïté : l'injecteur fonctionne au maximum de ses capacités physiques et cela ne suffit pas. Un seul capteur placé à l'un ou l'autre de ces points indiquerait simplement un "OD bas" sans indication de cause. Ensemble, ils vous indiquent :

  • Il ne s'agit pas d'un défaut de dosage (l'injecteur est au maximum)

  • Il ne s'agit pas d'une erreur de point de consigne (la boucle lente a déjà compensé autant qu'elle le pouvait)

  • La dégradation entre l'injection et la distribution dépasse ce qu'un seul injecteur peut couvrir

Les causes, par ordre de probabilité :

  1. Biofilm — l'accumulation de biofilm dans les infrastructures d'irrigation crée des conditions favorables à la pression d'agents pathogènes, à l'incohérence des éléments nutritifs et à l'épuisement continu de l'OD [8] ; programmez un rinçage et vérifiez à nouveau après 24 heures

  2. Pic de température — à mesure que la température de la solution dépasse 22–23 °C, le plafond de saturation d'équilibre de l'air diminue et les taux de décomposition s'accélèrent ; tout système d'oxygénation fonctionnant près de sa limite de performance aura du mal à compenser, et l'accélération de la décomposition érode le budget plus rapidement que prévu [1]

  3. Réduction du débit — un filtre obstrué ou une vanne partiellement fermée augmente le temps de séjour dans la conduite et donc la dégradation ; vérifiez la pression de la pompe et la perte de charge du filtre

  4. Baisse de rendement de l'unité d'oxygénation — encrassement des membranes, stocks de peroxyde bas, obstruction des conduites d'air venturi ; vérifiez que l'unité délivre son OD nominal et inspectez ou réapprovisionnez selon le calendrier du fabricant

  5. Limite de l'architecture — si les éléments ci-dessus sont résolus et que le problème persiste, le parcours de conduite est réellement trop long pour un seul point d'injection à ces températures de fonctionnement ; un second injecteur est nécessaire à mi-parcours

Aspects pratiques du positionnement du capteur

Capteur de sortie du bassin — montez-le dans le tuyau de sortie, idéalement dans une cellule à circulation continue plutôt que dans un raccord en T. Le capteur doit se trouver dans une eau en mouvement ; une zone stagnante donne des lectures artificiellement stables qui accusent un retard de plusieurs minutes par rapport à l'OD réel. Les capteurs optiques (luminescents) ont une réponse rapide et nécessitent moins d'entretien, consultez nos capteurs d'OD ici. Étalonnez conformément aux instructions.

Capteur de goutteur — c'est le positionnement le plus difficile. Options par ordre de préférence décroissant :

Un goutteur témoin dédié se déversant dans une petite cellule de mesure continue offre une lecture stable, mais nécessite une ligne de retour vers la vidange. C'est l'approche la plus précise et elle mérite l'installation de tuyauterie pour une exploitation de recherche ou à haute valeur ajoutée.

Non recommandé : un contrôle ponctuel manuel avec un lecteur d'OD portable sur plusieurs goutteurs, enregistré quotidiennement, peut remplacer un capteur fixe dans les exploitations de taille plus modeste. L'ajustement du point de consigne par la boucle lente se ferait alors manuellement plutôt qu'automatiquement — mais la logique de diagnostic reste identique.

Co-localisation de température — les deux capteurs doivent enregistrer la température en même temps que l'OD. Nos capteurs d'OD intègrent déjà un étalonnage thermique. Sans température, une lecture brute en mg/L est insuffisante : 8,0 mg/L à 15 °C équivaut à 88 % de saturation ; 8,0 mg/L à 25 °C est proche du maximum. Le pourcentage de saturation est plus parlant que la valeur absolue pour configurer des alarmes.

Interaction avec la programmation de l'irrigation

Un aspect de la gestion de l'OD que la plupart des producteurs négligent : le temps d'arrêt dans la conduite.

Lorsqu'une vanne de zone se ferme, l'eau dans les lignes de goutteurs reliant le collecteur aux émetteurs s'arrête de circuler. La décomposition de l'OD se poursuit dans cette eau stagnante pendant toute la durée de la période d'inactivité. Lorsque la zone s'ouvre à nouveau, la première impulsion d'irrigation distribue cette eau stagnante et appauvrie en OD directement aux racines avant que l'eau fraîche et enrichie provenant du collecteur n'arrive.

Des recherches sur des réseaux de canaux d'écoulement NFT en recirculation ont documenté un gradient d'OD clair le long du canal — bien que la concentration près de l'entrée soit adéquate (6,2 mg/L), elle a chuté à des valeurs critiques pour le concombre au niveau de l'emplacement de la dernière plante en aval (2,9 mg/L) [9]. Le même effet de gradient s'applique dans les lignes de distribution en goutte-à-goutte : les émetteurs les plus éloignés d'une vanne de zone reçoivent l'eau la plus ancienne et la plus appauvrie à chaque cycle d'irrigation.

Atténuations pratiques, par ordre de simplicité :

  • Impulsion de pré-rinçage courte — ouvrez la zone pendant 30 à 60 secondes avant l'événement d'irrigation principal afin de chasser l'eau stagnante avant la dose complète. Le volume est faible par rapport à l'irrigation totale, mais le bénéfice au niveau de l'OD pour les racines est significatif.

  • Augmentation de la fréquence d'irrigation — des impulsions plus fréquentes et plus courtes réduisent le temps d'inactivité et la stagnation dans les lignes de goutteurs. Cela tend également à améliorer l'uniformité de l'humidité du substrat.

  • Séquençage des zones — dans les systèmes multi-zones, échelonnez les temps de fermeture des vannes de manière à ce qu'aucune zone ne reste inactive pendant plus de 20 minutes durant les périodes d'irrigation active.

Résumé

Deux capteurs d'OD dans un système de goutte-à-goutte en boucle fermée effectuent des tâches fondamentalement différentes. Le capteur de bassin est un actionneur rapide — il déclenche l'injecteur quelques secondes après une baisse. Le capteur de goutteur est un intégrateur lent — il ajuste la notion de "suffisant" au niveau du bassin sur une échelle de temps allant de quelques heures à plusieurs semaines, compensant ainsi la température, le biofilm et les variations saisonnières.

Aucun des deux capteurs pris individuellement ne suffit. Le capteur de bassin sans capteur de goutteur n'a aucun moyen de savoir si sa consigne est adaptée aux conditions actuelles. Le capteur de goutteur seul, contrôlant directement l'injection, se heurte à un temps de transport de 17 minutes et oscille.

Ensemble, ils forment un système de contrôle où la boucle rapide n'est jamais perturbée par une dérive lente, et la boucle lente n'est jamais dépassée par des perturbations rapides. Le point de consigne qui émerge de ce système — enregistré sur la durée — devient l'un des historiques les plus riches d'enseignements dans la serre : un historique combiné de la température, du biofilm et de la santé du système qu'aucune mesure unique ne pourrait fournir.

Références

  1. HORIBA (2023). Oxygène dissous en serre. https://www.horiba.com/int/water-quality/applications/agriculture-crop-science/dissolved-oxygen-in-greenhouse/

  2. Hanna Instruments (2019). Mesure de l’oxygène dissous des solutions nutritives hydroponiques. https://blog.hannainst.com/measuring-dissolved-oxygen-of-hydroponic-nutrient-solutions/

  3. Cui B-J, Niu W-Q, et al. (2023). Évolution de la concentration en oxygène dissous dans un système d’irrigation goutte-à-goutte aéré avec différents goutteurs. Irrigation Science. https://doi.org/10.1007/s00271-023-00850-1

  4. Vogrincic S. (2026). Oxygène dissous — le moteur caché de la performance racinaire dans les cultures en serre. Grower2Grower. https://www.grower2grower.co.nz/dissolved-oxygen-the-hidden-driver-of-root-performance-in-greenhouse-crops/

  5. Bhattarai S P, Huber S, Midmore D J (2016). Dimension temporelle et spatiale de la saturation en oxygène dissous avec oscillateur fluidique et injecteur d’air Mazzei dans les systèmes d’irrigation hors-sol. Irrigation Science, 34. https://doi.org/10.1007/s00271-016-0512-x

  6. NC Farms Inc. (2021). Oxygène dissous : tout ce que vous devez savoir sur le DO. https://www.ncfarmsinc.com/articles/dissolved-oxygen-everything-you-need-to-know-about-do/

  7. Lund D, Key Solutions Group (2025). Biofilm, pathogènes et coûts des systèmes d’irrigation sales. MMJ Daily. https://www.mmjdaily.com/article/9822230/biofilm-pathogens-and-the-costs-of-dirty-irrigation-systems/

  8. Suhl J, et al. (2019). Consommation d’oxygène dans une technique du film nutritif en recirculation en aquaponie. Scientia Horticulturae. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2019.04.076

  9. Goto E, et al. (2001). Effet de la concentration en oxygène dissous sur la croissance de la laitue en hydroponie flottante. Acta Horticulturae, 548. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/11541573/

Laissez-nous un message
Planifier un appel